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細胞培養的基本知識

操作前準備工作：

1.玻璃吸管和玻璃培養瓶的消毒：1)高壓蒸汽滅菌15分鐘以上；2)干烤消毒140度2小時以上；

2.無菌工作臺先清洗后用75%酒精擦拭干凈，紫外線照射40分鐘以上；各種培養板照射3小時以上；

3.培養基(pH7.2)和血清配制好后要做無菌試驗：將血清按10%加入培養基內，用無菌的玻璃離心管或玻璃瓶取完全培養基5-10ml置培養箱內培養2-3天，肉眼見無渾濁或沉淀等異物。分裝后置-20度保存；

4.消化液(pH7.8)或其它加入液，應用高壓蒸汽滅菌或一次性無菌濾器過濾除菌，分裝成支置-20度保存；

5.各種凍存的液體復溫時應邊搖邊融化，否則有的液體（特別是培養基）容易產生沉淀；

6.培養箱應先用清水清洗后用75%酒精擦拭一遍（如有紫外線的應照射1小時以上，如有高溫滅菌的應按程序來菌）至少每月一次；

7.進入操作時應注意先清洗雙手及手腕，然后用75%酒精擦拭，操作時注意無菌臺內空間層次。手及物品不要在暴露的瓶口上方來往，如果數量較多，培養瓶應放在與酒精燈平行地方便于操作，瓶與瓶之間應相隔一定的距離，開瓶（蓋）時應先用75%酒精反復擦拭或用燈燒，開開后應用燈先燒口，然后燒蓋用完后同樣操作，整個操作過程盡量在無菌臺靠里面一點。

復蘇：

1.應遵守慢凍快融的原則，先將水溫鍋調至37-37.5度，取出凍存的細胞迅速放入后交細胞面浸至水面以下不斷搖動至融化；

2.在無菌臺內將完全培養基加入50ml的小培養瓶內，約5ml左右，然后用無菌吸管從凍存管內取出細胞，置培養并內輕輕搖晃，使細胞均勻后置培養箱內培養。

傳代：

1.貼壁細胞：

對于貼壁細胞應先吸（倒）盡培養基，吸的越干凈越好，以免中和后加入的消化液，使強度減弱，50ml培養瓶加入消化液約0.6ml，按此比例進行消化，（根據配制強度經驗），晃動使消化液鋪均勻置37度培養箱約2分鐘，鏡下見細胞收縮變圓或少數脫落后，輕輕振動瓶底使細胞全部脫落，加入2-3ml完全培養基后，輕輕吹打，使細胞基本成單個懸浮，然后分置其它無菌培養瓶內，加入完全培養基后繼續培養或實驗。

2.懸浮細胞：

一般傳代可直接將細胞原液分置其它培養瓶內，加入完全培養基繼續培養，如要高濃度可先離心500rpm，5min后加入完全培養基，輕輕吹勻后，分置其它培養瓶內加入完全培養基繼續培養。

無菌操作：

簡要介紹：

1.將試驗用品放入超凈工作臺用紫外線照射30分鐘；2. 照射30分鐘后，進入緩沖間，換滅菌的無菌衣，換專用拖鞋；3.手部用5％的潔爾滅浸泡2分鐘，進入潔凈區后，用75％的酒精棉球再次擦拭裸露的手部。4.最好戴口罩；5.操作時盡量靠近火焰；6.裝培養基的瓶子等不要直接口向上，用一個架子斜放，瓶口朝向火焰；7.標準操作，不要讓無菌吸管到處碰來碰去；8.中途出入無菌室，再次操作時，一定要再次用75％的酒精棉球消毒。

活細胞計數：

1、先消化吹打使細胞盡量變成單細胞懸液；

2、取出細胞液按你的濃度加入臺盼蘭置室溫5分鐘左右；

3、準備好潔凈的計數板及蓋玻片放在一旁，用玻璃滴管吸取染好并輕輕吹勻的細胞液，將滴管尖端輕輕靠在蓋玻與計數板的縫隙間，微微捏一下滴管膠頭細胞自動就被吸到計數板里了（捏重了細胞不均勻，計數不準，細胞還會流出）。

4、在鏡下計數。

四角的4個大方格內細胞總數÷4×10000=你滴入時細胞液每ml的細胞數。

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